Лабораторная и клиническая

медицина. Фармация

Научно-практический ежеквартальный рецензируемый журнал

ISSN 2712-9330 (Online)

  • Сквозной номер выпуска: 1
  • Страницы статьи: 57-68
  • Поделиться:

Рубрика: Обзорные статьи

В настоящее время клиническая лабораторная диагностика мужского бесплодия является неотъемлемой частью лечебно-диагностического процесса в сфере репродуктивной медицины. В данном реферативном обзоре представлена информация о новых и традиционных иммунологических, клеточных, биохимических и других маркерах эякулята человека. К сожалению, в настоящее время в силу отсутствия обновленных клинических рекомендаций по диагностике мужского и женского бесплодия, все чаще применяются неинформативные алгоритмы и несовместимые критерии оценки. Такая ситуация приводит к противоречивым дискуссиям, где ставится под сомнение диагностическая функция лабораторных маркеров и тестов. В целях углубленного изучения возможных причин мужской инфертильности и субфертильности необходим постоянный поиск инновационных подходов, предложение рациональных решений на основе уже существующих и новых и лабораторных маркеров.

Ж. Ю. Сапожкова – к.м.н, руководитель Международной Школы Цитологии и Медицинской Школы Инноваций, Москва, Россия; заведующий Подольским диагностическим центром, г. Подольск, Московская область, Россия. E-mail: Адрес электронной почты защищен от спам-ботов. Для просмотра адреса в вашем браузере должен быть включен Javascript.
Г. А. Милованова – ординатор кафедры клинической лабораторной диагностики РМАНПО, Москва, Россия. E-mail: Адрес электронной почты защищен от спам-ботов. Для просмотра адреса в вашем браузере должен быть включен Javascript.
О. И. Пацап – к.м.н., заведующая патологоанатомическим отделением ФГБУ ?Федеральный центр мозга и нейротехнологий? ФМБА, Москва, Россия. E-mail: Адрес электронной почты защищен от спам-ботов. Для просмотра адреса в вашем браузере должен быть включен Javascript.

1. Leisegang K., Dutta S. Do lifestyle practices impede male fertility? // Andrologia. 2021. V. 53. No. 1. e13595. DOI: 10.1111/and.13595
2. Сапожкова Ж.Ю., Еремин К.И. Модификация аналитического этапа спермограммы // Клиническая лабораторная диагностика. 2020. Т. 65. № 2. С. 106-110. DOI: 10.18821/0869-2084-2020-65-2-106-110
3. Сапожкова Ж.Ю., Еремин К.И. Долгов В.В. Унификация процедур цитохимического окрашивания эякулята для определения фертильности мужчины // Лабораторная диагностика. Восточная Европа. 2020. Т. 9. № 1–2. С. 41-49. DOI: 10.34883/PI.2020.9.1.026
4. Сапожкова Ж.Ю. Способ микроскопической диагностики качества спермы после седиментации эякулята: Патент на интеллектуальную собственность, 2019. ? 2 686685. URL: http://new.fips.ru
5. Сапожкова Ж.Ю., Еремин К.И. Способ комбинированного измерения концентрации пероксидазо-положительных клеток (нейтрофильных гранулоцитов) и сперматозоидов в эякуляте человека с использованием вариаций на основе цитохимического окрашивания: Патент на интеллектуальную собственность, 2020. ? 2 726207
6. Fijak M., Pilatz A., Hedger M.P., et al. Infectious, inflammatory and 'autoimmune' male factor infertility: how do rodent models inform clinical practice? // Hum Reprod Update. 2018. V. 24. No. 4. P. 416-441. DOI: 10.1093/humupd/dmy009
7. Avellar M.C.W., Ribeiro C.M., Dias-da-Silva M.R., Silva E.J.R. In search of new paradigms for epididymal health and disease: innate immunity, inflammatory mediators, and steroid hormones // Andrology. 2019. V. 7. NO. 5. P. 690-702. DOI: 10.1111/andr.12654
8. Page S.T., Plymate S.R., Bremner W.J., et al. Effect of medical castration on CD4+ CD25+ T cells, CD8+ T cell IFN-gamma expression, and NK cells: a physiological role for testosterone and/or its metabolites // Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. 2006. V. 290. No. 5. P. E856-E863. DOI: 10.1152/ajpendo.00484.2005
9. Cannarella R., Mancuso F., Condorelli R.A., et al. Effects of GH and IGF1 on Basal and FSH-Modulated Porcine Sertoli Cells In-Vitro // J. Clin. Med. 2019. V. 8. No. 6. P. 811. Published 2019 Jun 6. DOI: 10.3390/jcm8060811
10. Meroni S.B., Galardo M.N., Rindone G., et al. Molecular Mechanisms and Signaling Pathways Involved in Sertoli Cell Proliferation // Front. Endocrinol. (Lausanne). 2019. No. 10. P. 224. Published 2019 Apr 16. DOI: 10.3389/fendo.2019.00224
11. Wang X.X., Ying P., Diao F., et al. Altered protein prenylation in Sertoli cells is associated with adult infertility resulting from childhood mumps infection // J. Exp. Med. 2013. V. 210. No. 8. P. 1559-1574. DOI: 10.1084/jem.20121806
12. T?ttelmann F., Nieschlag E. Nosologie andrologischer Krankheitsbilder // Andrologie – Grundlagen und Klinik der reproduktiven Gesundheit des Mannes. 3rd ed. / eds. Nieschlag E., Behre H.M., Nieschlag S. Heidelberg: Springer, 2009. P. 90–96.
13. Mazumdar S., Levine A.S. Antisperm antibodies: etiology, pathogenesis, diagnosis, and treatment // Fertil. Steril. 1998. V. 70. No. 5. P. 799-810. DOI: 10.1016/s0015-0282(98)00302-1
14. Chamley L.W., Clarke G.N. Antisperm antibodies and conception // Semin Immunopathol. 2007. V. 29. No. 2. P. 169-184. DOI: 10.1007/s00281-007-0075-2
15. Bohring C., Krause W. Immune infertility: towards a better understanding of sperm (auto)-immunity. The value of proteomic analysis // Hum. Reprod. 2003. V. 18. No. 5. P. 915-924. DOI: 10.1093/humrep/deg207
16. Marconi M., Pilatz A., Wagenlehner F., et al. Are antisperm antibodies really associated with proven chronic inflammatory and infectious diseases of the male reproductive tract? // Eur. Urol. 2009. V. 56. No. 4. P. 708-715. DOI: 10.1016/j.eururo.2008.08.001
17. Bozhedomov V.A., Lipatova N.A., Alexeev R.A., et al. The role of the antisperm antibodies in male infertility assessment after microsurgical varicocelectomy // Andrology. 2014. V. 2. No. 6. P. 847-855. DOI: 10.1111/j.2047-2927.2014.00254.x
18. Sikka S.C., Hellstrom W.J. Current updates on laboratory techniques for the diagnosis of male reproductive failure // Asian. J. Androl. 2016. V. 18. No. 3. P. 392-401. DOI: 10.4103/1008-682X.179161
19. Ver?n G.L., Molina R.I., Tissera A.D., et al. Incidence of Sperm Surface Autoantibodies and Relationship with Routine Semen Parameters and Sperm Kinematics // Am. J. Reprod. Immunol. 2016. V. 76. No. 1. P. 59-69. DOI: 10.1111/aji.12519
20. Tchiokadze Sh., Galdava G. Clinical and anamnestic characteristics of development of antisperm immunity in infertile men // Georgian Med. News. 2015. No. 246. P. 18-22.
21. Hu Y.Y., Wang L.Y., Song B.T., et al. // Zhonghua Nan Ke Xue. 2017. V. 23. No. 7. P. 620-625.
22. Huo Yю, Xu Yю, Wang Jю, et al. Analysis of the serum reproductive system related autoantibodies of infertility patients in Tianjin region of China // Int. J. Clin. Exp. Med. 2015. V. 8. NO. 8. P. 14048-14053. Published 2015 Aug 15.
23. Приказ Министерства здравоохранения Российской Федерациb от 26 февраля 2003 г. № 67 ?О применении вспомогательных репродуктивных технологий (ВРТ) в терапии женского и мужского бесплодия?: Зарегистрировано Министерством юстиции Российской Федерации 24 апреля 2003 г. Регистрационный № 4452. М., 2003.
24. Nowicka-Bauer K., Kamieniczna M., Cibulka J., et al. Proteomic identification of sperm antigens using serum samples from individuals with and without antisperm antibodies // Andrologia. 2016. V. 48. No. 6. P. 693-701. DOI: 10.1111/and.12502
25. Bobak L., Bobakova D., Vaczy Z., et al. Incidence of antibodies in women after failure of assisted reproduction // Bratisl. Lek. Listy. 2014. V. 115. No. 3. P. 145-149. DOI: 10.4149/bll_2014_031
26. Son Y., Heo K., Bae M.J., et al. Injury to the blood-testis barrier after low-dose-rate chronic radiation exposure in mice // Radiat. Prot. Dosimetry. 2015. V. 167. No. 1-3. P. 316-320. DOI: 10.1093/rpd/ncv270
27. Ronquist G. Prostasomes: Their Characterisation: Implications for Human Reproduction: Prostasomes and Human Reproduction // Adv. Exp. Med. Biol. 2015. V. 868. P. 191-209. DOI: 10.1007/978-3-319-18881-2_9
28. Fathy A., Chen S.J., Novak N., et al. Differential leucocyte detection by flow cytometry improves the diagnosis of genital tract inflammation and identifies macrophages as proinflammatory cytokine-producing cells in human semen // Andrologia. 2014. V. 46. No. 9. P. 1004-1012. DOI: 10.1111/and.12188
29. Tremellen K., Tunc O. Macrophage activity in semen is significantly correlated with sperm quality in infertile men // Int. J. Androl. 2010. V. 33. No. 6. P. 823-831. DOI: 10.1111/j.1365-2605.2009.01037.x
30. Pelliccione F., D'Angeli A., Cordeschi G., et al. Seminal macrophages in ejaculates from men with couple infertility // Int. J. Androl. 2009. 32(6):623-628. DOI: 10.1111/j.1365-2605.2008.00909.x
31. Haidl F., Haidl G., Oltermann I., Allam J.P. Seminal parameters of chronic male genital inflammation are associated with disturbed sperm DNA integrity // Andrologia. 2015. V. 47. No. 4. P. 464-469. DOI: 10.1111/and.12408
32. Pochernikov D.G., Vinokurov E. Iu., Strel'nikov A.I., Iakovleva L.V. Experience in the treatment of autoimmune male infertility in patients with category 4 chronic prostatitis // Urologiia. 2014. No. 6. P. 75-80.
33. Who laboratory manual for the examination and processing of human semen. 5th ed. Geneva, 2010. 287 p. URL: http://apps.who.int/ iris/bitstream/10665/44261/1/ 9789241547789_eng.pdf
34. Клинические рекомендации по андрологическои? урологии / под ред. П.А. Щеплева. М.: Медфорум, 2016. 120 с. [Clinical guidelines for andrology urology / еd. by P.A. Scheplev. Moscow: Medforum, 2016. 120 p. (In Russ.)].
35. Hambidge K.M., Krebs N.F. Zinc deficiency: a special challenge // J. Nutr. 2007. V. 137. No. 4. P. 1101-1105. DOI: 10.1093/jn/137.4.1101. PMID: 17374687.
36. Powell S.R. The antioxidant properties of zinc // J. Nutr. 2000. V. 130. No. 5S, Suppl. P. 1447S-1454S. DOI: 10.1093/jn/130.5.1447S
37. Omu A.E., Al-Azemi M.K., Kehinde E.O., et al. Indications of the mechanisms involved in improved sperm parameters by zinc therapy // Med. Princ. Pract. 2008. V. 17. No. 2. P. 108-116. DOI: 10.1159/000112963
38. Cooper T.G., Yeung C.H., Nashan D., et al. Improvement in the assessment of human epididymal function by the use of inhibitors in the assay of alpha-glucosidase in seminal plasma // Int. J. Androl. 1990. V. 13. No. 4. P. 297-305. DOI: 10.1111/j.1365-2605.1990.tb01035.x
39. Guerin J.F., Ali H.B., Rollet J., Souchier C., Czyba J.C. Alpha-glucosidase as a specific epididymal enzyme marker. Its validity for the etiologic diagnosis of azoospermia // J. Androl. 1986. V. 7. No. 3. P. 156-162. DOI: 10.1002/j.1939-4640.1986.tb00901.x
40. Casano R., Orlando C., Caldini A.L., et al. Simultaneous measurement of seminal L-carnitine, alpha,1-4-glucosidase, and glycerylphosphorylcholine in azoospermic and oligozoospermic patients // Fertil. Steril. 1987. V. 47. No. 2. P. 324-328. DOI: 10.1016/s0015-0282(16)50013-2
41. Guerin J.F., Ali H.B., Rollet J., et al. Alpha-glucosidase as a specific epididymal enzyme marker. Its validity for the etiologic diagnosis of azoospermia // J. Androl. 1986. V. 7. No. 3. P. 156-162. DOI: 10.1002/j.1939-4640.1986.tb00901.x
42. Haidl G., Badura B., Hinsch K.D., et al. Disturbances of sperm flagella due to failure of epididymal maturation and their possible relationship to phospholipids // Hum. Reprod. 1993. V. 8. No. 7. P. 1070-1073. DOI: 10.1093/oxfordjournals.humrep.a138194
43. Wein A.J., Kavoussi L.R., Novick A.C., et al. Campbell Walsh Urology: Expert Consult Premium Edition: Enhanced Online Features and Print. Vol. 4. Philadelphia: Elsevier Health Sciences, 2011.
44. Plant T.M., Zeleznik A.J. Knobil and Neills Physiology of Reproduction. Amsterdam: Elsevier/Academic Press, 2015.
45. Obidoa O., Ezeanyika L.U., Okoli A.H. Effect of scopoletin on male guinea pig reproductive organs. I. Levels of citric acid and fructose // Int. Urol. Nephrol. 1999. V. 31. P. 107 111.
46. Lewis-Jones D.I., Aird I.A., Biljan M.M., Kingsland C.R. Effects of sperm activity on zinc and fructose concentrations in seminal plasma // Hum Reprod. 1996. V. 11. No. 11. P. 2465-2467. DOI: 10.1093/oxfordjournals.humrep.a019138
47. Mann T. Studies on the metabolism of semen; fructose as a normal constituent of seminal plasma; site of formation and function of fructose in semen // Biochem. J. 1946. V. 40. No. 4. P. 481-491. DOI: 10.1042/bj0400481
48. Nayernia K., Adham I., Shamsedin R., Engel W. The role of acrosin in reproduction // J. Reprod. Infertil. 2000. V. 1. No. 4. P. 38-43.
49. Peknicova J., Chladek D., Hozak P. Monoclonal antibodies against sperm intra-acrosomal antigens as markers for male infertility diagnostics and estimation of spermatogenesis // Am. J. Reprod. Immunol. 2005. V. 53. No. 1. P. 42-49. DOI: 10.1111/j.1600-0897.2004.00245.x
50. Lewis S.E., Sterling E.S., Young I.S., Thompson W. Comparison of individual antioxidants of sperm and seminal plasma in fertile and infertile men // Fertil. Steril. 1997. V. 67. No. 1. P. 142-147. DOI: 10.1016/s0015-0282(97)81871-7
51. Suleiman S.A., Ali M.E., Zaki Z.M., et al. Lipid peroxidation and human sperm motility: protective role of vitamin E // J. Androl. 1996. V. 17. No. 5. P. 530-537.
52. Fisher H.M., Aitken R.J. Comparative analysis of the ability of precursor germ cells and epididymal spermatozoa to generate reactive oxygen metabolites // J. Exp. Zool. 1997. V. 277. No. 5. P. 390-400. DOI: 10.1002/(sici)1097-010x(19970401)277:53.0.co;2-k
53. Sanocka D., Miesel R., Jedrzejczak P., Kurpisz M.K. Oxidative stress and male infertility // J. Androl. 1996. V. 17. No. 4. P. 449-454.
54. Agarwal A., Allamaneni S.S., Nallella K.P., et al. Correlation of reactive oxygen species levels with the fertilization rate after in vitro fertilization: a qualified meta-analysis // Fertil. Steril. 2005. V. 84. No. 1. P. 228-231. DOI: 10.1016/j.fertnstert.2004.12.057
55. Smith R., Vantman D., Ponce J., et al. Total antioxidant capacity of human seminal plasma // Hum. Reprod. 1996. V. 11. No. 8. P. 1655-1660. DOI: 10.1093/oxfordjournals.humrep.a019465

Статью можно приобрести
в электронном виде!

PDF формат

Бесплатно

DOI: 10.14489/lcmp.2021.01.pp.057-068
Тип статьи: Обзор
Покупка физ. лицом Покупка юр. лицом

Ключевые слова

Для цитирования статьи

Сапожкова Ж.Ю., Милованова Г.А., Пацап О.И. Лабораторная диагностика мужского бесплодия. Маркеры. Часть I // Лабораторная и клиническая медицина. Фармация. 2021. Т. 1, № 1. С. 57 – 68. DOI: 10.14489/lcmp.2021.01.pp.057-068