Инфекции, вызванные вирусом папилломы человека (ВПЧ), и связанные с ними заболевания являются серьезной проблемой во всем мире. Особого внимания заслуживает иммунный ответ при инфицировании вирусом папилломы человека пациентов с вирусом иммунодефицита человека (ВИЧ). ВПЧ служит этиологическим фактором и биологическим канцерогеном для поражений и рака, связанных с ВПЧ. В настоящее время известно множество возможных механизмов ускользания вирусов от факторов врожденного и адаптивного иммунитета. Несмотря на большое количество накопленных знаний о течении ВИЧ- и папилломавирусных инфекций, ранняя диагностика и своевременное лечение коинфицированных пациентов затруднены, что неблагоприятно сказывается на прогнозе их жизни. По-прежнему существует необходимость в расширении ранних методов диагностики инфицирования папилломавирусом у ВИЧ-инфицированных лиц и поиске эффективных методов лечения.
Татьяна Владимировна Махорина– к.м.н., научный сотрудник лаборатории ?Трансмиссивных вирусных инфекций и клещевого энцефалита? Федерального бюджетного учреждения науки ?Федеральный научно-исследовательский институт вирусных инфекций ?Виром? Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, Екатеринбург, Россия E-mail: Адрес электронной почты защищен от спам-ботов. Для просмотра адреса в вашем браузере должен быть включен Javascript.
Ксения Эльбертовна Боева – младший научный сотрудник лаборатории ?Трансмиссивных вирусных инфекций и клещевого энцефалита? Федерального бюджетного учреждения науки ?Федеральный научно-исследовательский институт вирусных инфекций ?Виром? Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, Екатеринбург, Россия E-mail: Адрес электронной почты защищен от спам-ботов. Для просмотра адреса в вашем браузере должен быть включен Javascript.
Галина Владимировна Малышкина – младший научный сотрудник лаборатории ?Трансмиссивных вирусных инфекций и клещевого энцефалита? Федерального бюджетного учреждения науки ?Федеральный научно-исследовательский институт вирусных инфекций ?Виром? Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, Екатеринбург, Россия E-mail: Адрес электронной почты защищен от спам-ботов. Для просмотра адреса в вашем браузере должен быть включен Javascript.
Александр Владимирович Семёнов – д.б.н., руководитель Федерального бюджетного учреждения науки ?Федеральный научно-исследовательский институт вирусных инфекций ?Виром? Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, член общества ?Санкт-Петербургское региональное отделение Российской Ассоциации Аллергологов и Клинических Иммунологов?. Профессор кафедры экспериментальной биологии и биотехнологии ?Института естественных наук и математики? Уральского федерального университета имени Первого президента России Б. Н. Ельцина. E-mail: Адрес электронной почты защищен от спам-ботов. Для просмотра адреса в вашем браузере должен быть включен Javascript.
1. Lefkowitz E.J., Dempsey D.M., Hendrickson R.C., et al. Virus taxonomy: the database of the International Committee on Taxonomy of Viruses (ICTV) // Nucleic Acids Research. 2018. Vol. 46, N D1. P. 708-717. DOI: 10.1093/nar/gkx932
2. Bernard H.U., Burk R.D., Chen Z., et al. Classification of papillomaviruses (PVs) based on 189 PV types and proposal of taxonomic amendments // Virology. 2019. Vol. 39, N 29. P. 70-79. DOI: 0.1016/j.virol.2010.02.002
3. De Villiers E.M. Classification of papilloma-viruses // Virology. 2004. Vol. 324, N 1. P. 17-27. DOI: 10.1016/ j.virol.2004.03.033
4. Szarewski A. Cervarix?: a bivalent vaccine against HPV types 16 and 18, with cross-protection against other high-risk HPV types // Expert Rev Vaccines. 2012. Vol. 11, N 6. P. 645-657. DOI: 10.1586/erv.12.42
5. Zhai L., Tumban T. Gardasil-9?: A global survey of projected efficacy // Antiviral Research. 2016. Vol. 130. P. 101-109. DOI: 10.1016/j.antiviral.2016.03.016
6. Siegel R.L., Miller K.D., Jemal A. Cancer statistics. C.A: A Cancer // Jourlan for Clinicans. 2017. Vol. 67, N 1. P. 7-30. DOI: 10.3322/caac.21387
7. Serrano B., Brotons M., Bosch F.X., et al. Epidemiology and burden of HPV-related disease // Best Practice & Research Clinical Obstetrics & Gynaecology. 2018. Vol. 47. P. 14-26. DOI: 10.1016/j.bpobgyn.2017.08.006
8. Viarisio D., Gissmann L., Tommasino M. Human papillomaviruses and carcinogenesis: wellestablished and novel models // Current Opinion in Virology. 2017. Vol. 26. P. 56-62. DOI: 10.1016/j.coviro.2017.07.014
9. Brianti P., De Flammineis E., Mercuri S.R. Review of HPV-related diseases and cancers // New Microbiologica. 2017. Vol. 40, N 2. P. 80-85. PMID: 28368072.
10. Crosbie E.J., Einstein M.H., Franceschi S, et al. Human papillomavirus and cervical cancer // Lancet. 2013. Vol. 382, N 9895. P. 889-899. DOI: 10.1016/S0140-6736(13)60022-7
11. Daud I.I., Scott M.E., Ma Y. Association between toll-like receptor expression and human papilloma-virus type 16 persistence // International Journal of Cancer. 2011. Vol. 128, N 4. P. 879-886. DOI: 10.1002/ijc.25400
12. Joseph A.W., Cody J.W., Dohun P. Evasion of host immune defenses by human papillomavirus Virus Research. 2017. Vol. 231. P. 21-33. DOI: 10.1016/j.virusres.2016.11.023
13. Haller O., Kochs G., Weber F. The interferon response circuit: induction and suppression by pathogenic viruses // Virology. 2006. Vol. 344, N 1. P. 119-130. DOI: 10.1016/j.virol.2005.09.024
14. Tummers B., Goedemans R., Pelascini L.P., et al. The interferon-related developmental regulator 1 is used by human papillomavirus to suppress NF?B activation // Nature Communications. 2015. Vol. 6. P. 6537. DOI: 10.1038/ncomms7537
15. Richards K.H., Doble R., Wasson C.W., et al. Human papillomavirus E7 oncoprotein increases production of the anti-inflammatory interleukin-18 binding protein in keratinocytes // Journal of Virology. 2014. Vol. 88, N 8. P. 4173-4179. DOI: 10.1128/JVI.02546-13
16. Shurin G.V., Ferri R.L., Tourkova I.L., et al. Loss of new chemokine CXCL14 in tumor tissue is associated with low infiltration by dendritic cells (DC), while restoration of human CXCL14 expression in tumor cells causes attraction of DC both in vitro and in vivo // Journal of Immunology. 2005. Vol. 174, N 9. P. 5490-5498. DOI: 10.4049/jimmunol.174.9.5490
17. Cicchini L., Westrich J.A., Xu T., et al. Suppression of antitumor immune responses by human papilloma-virus through epigenetic downregulation of CXCL14 // MBio. 2016. Vol. 7, N 3. P. е00270-16. DOI: 10.1128/mBio.00270-16
18. Sotlar K., K?veker G., Aepinus C., et al. Human papillomavirus type 16-associated primary squamous cell carcinoma of the rectum // Gastroenterology. 2001. Vol. 120, N 4. P. 988-994. DOI: 10.1053/gast. 2001.22523
19. Fahey L.M., Raff A.B., Da Silva D.M., et al. A major role for the minor capsid protein of human papillomavirus type 16 in immune escape // Journal of Immunology. 2009. Vol. 183, N 10. P. 6151-6156. DOI: 10.4049/jimmunol.0902145
20. Amador-Molina A., Hernandez-Valencia J.F., Lamoyi E., et al. Role of innate immunity against human papillomavirus (HPV) infections and effect of adjuvants in promoting specific immune response // Viruses. 2013. Vol. 5, N 11. P. 2624-2642. https: 10.3390/ v5112624
21. Orange J.S. Natural killer cell deficiency // Journal of Allergy and Clinical Immunology. 2013. Vol. 132, N 3. P. 515-525. DOI: 10.1016/j.jaci.2013.07.020
22. Handisurya A., Day P.M., Thompson C.D., et al. Strain-specific properties and T cells regulate the suscepti-bility to papilloma induction by Mus musculus papilloma-virus 1 // PLOS Pathogens. 2014. Vol. 10, N 8. P. e1004314. DOI: 10.1371/journal.ppat. 1004314
23. Uberoi A., Yoshida S., Frazer I.H., et al. Role of ultraviolet radiation in papillomavirus-induced disease // PLOS Pathogens. 2016. Vol. 12, N 5. P. e1005664. DOI: 10.1371/journal.ppat.1005664
24. Jackson S.E., Mason G.M., Wills M.R. Human cytomegalovirus immunity and immune evasion // Virus Research. 2011. Vol. 157, N 2. P. e1005664 151-160. DOI: 10.1016/j.virusres.2010.10.031
25. DiMaio D., Petti L.M. The E5 proteins // Virology. 2013. Vol. 445, N 1-2. P. 99-114. DOI: 10.1016/j.virol.2013.05.006
26. Campo M.S., Graham S.V., Cortese M.S., et al. HPV-16 E5 down-regulates expression of surface HLA class I and reduces recognition by CD8 T cells // Virology. 2010. Vol. 407, N 1. P. 137-142. DOI: 10.1016/j.virol.2010.07.044
27. Miura S., Kawana K., Schust D.J., et al. CD1d, a sentinel molecule bridging innate and adaptive immunity, is downregulated by the human papillomavirus (HPV) E5 protein: a possible mechanism for immune evasion by HPV // Journal of Virology. 2010. Vol. 84, N 22. P. 11614-11623. DOI: 10.1128/JVI.01053-10
28. Ashrafi G.H., Haghshenas M., Marchetti B., et al. E5 protein of human papillomavirus 16 downregulates HLA class I and interacts with the heavy chain via its first hydrophobic domain // International Journal of Cancer. 2006. Vol. 119, N 9. P. 2105-2112. DOI: 10.1002/ijc.22089
29. Seitz H., Schmitt M., Bohmer G., et al. Natural variants in the major neutralizing epitope of human papillomavirus minor capsid protein L2 // International Journal of Cancer. 2013. Vol. 132, N 3. P. Е139-148. DOI: 10.1002/ijc.27831
30. Strickler H.D., Burk R.D., Fazzari M., et al. Natural history and possible reactivation of human papilloma-virus in human immunodeficiency virus-positive women // Journal of the National Cancer Institute. 2005. Vol. 97, N 8. P. 577-586. DOI: 10.1093/jnci/ dji073
31. Wang C.J., Sparano J., Palefsky J.M. Human immunodeficiency virus/AIDS, human papillomavirus, and anal cancer // Surgical Oncology Clinics of North America. 2017. Vol. 26, N 1. P. 17-31. DOI: 10.1016/j.soc.2016.07.010
32. Bonnet F., Ch?ne G. Evolving epidemiology of malignancies in HIV // Current Opinion in Oncology. 2008. Vol. 20, N 5. P. 534-540. DOI: 10.1097/CCO.0b013e32830a5080
33. Shiels M.S., Cole S.R., Kirk G.D., et al. A meta-analysis of the incidence of non-AIDS cancers in HIV-infected individuals // Journal of Acquired Immune Deficiency Syndromes. 2009. Vol. 52, N 5. P. 611-622. DOI: 10.1097/QAI.0b013e3181b327ca
34. Williamson A.L. The interaction between human immunodeficiency virus and human papillomaviruses in heterosexuals in Africa // Journal of Clinical Medicine. 2015. Vol. 4, N 4. P. 579-592. DOI: 10.3390/jcm4040579
35. Scott M., Nakagawa M., Moscicki A.B. Cellmediated immune response to human papillomavirus infection // Clinical and Diagnostic Laboratory Immunology. 2001. Vol. 8, N 2. P. 209-220. DOI: 10.1128/CDLI.8.2.209-220.2001
36. Alkhatib G. The biology of CCR5 and CXCR4 // Current Opinion in HIV AIDS. 2009. Vol. 4, N 2. P. 96-103. DOI: 10.1097/COH.0b013e328324bbec
37. Burger J.A., Kipps T.J. CXCR4: a key receptor in the crosstalk between tumor cells and their microenvironment // Blood. 2006. Vol. 107, N 5. P. 1761-1767. DOI: 10.1182/blood-2005-08-3182
38. Ansari A.W., Heiken H., Moenkemeyer M., et al. Dichotomous effects of C-C chemokines in HIV-1 pathogenesis // Immunology Letters. 2007. Vol. 110, N 1. P.1-5. DOI: 10.1016/j.imlet.2007.02.012
39. Rice A.P. The HIV-1 Tat protein: mechanism of action and target for HIV-1 cure strategies // Current Pharmaceutical Design. 2017. Vol. 23, N 28. P. 4098-4102. DOI: 10.2174/ 1381612823666170704130635
40. Palefsky J. Biology of HPV in HIV infection // Advances in Dental Research. 2006. Vol. 19, N 1. P. 99-105. DOI: 10.1177/154407370601900120
41. Das A.T., Harwig A., Berkhout B. The HIV-1 Tat protein has a versatile role in activating viral transcription // Journal of Virology. 2011. Vol. 85, N 18. P. 9506-9516. DOI: 10.1128/JVI.00650-11
42. Syrjanen S. Human papillomavirus infection and its association with HIV // Advances in Dental Research. 2011. Vol. 23, N 1. P. 84-89. DOI: 10.1177/0022034511399914
43. Barillari G., Palladino C., Bacigalupo I., et al. Entrance of the Tat protein of HIV-1 into human uterine cervical carcinoma cells causes upregulation of HPV-E6 expression and a decrease in p53 protein levels // Oncology Letters. 2016. Vol. 12, N 4. P. 2389-2394. DOI: 10.3892/ol.2016.4921
44. Nyagol J., Leucci E., Onnis A., et al. The effects of HIV-1 Tat protein on cell cycle during cervical carcino-genesis // Cancer Biology and Therapy. 2006. Vol. 5, N 6. P. 684-690. DOI: 10.4161/cbt.5. 6.2907
45. Nakagawa M., Stites D.P., Palefsky J.M., et al. CD4-positive and CD8-positive cytotoxic T lymphocytes contribute to human papillomavirus type 16 E6 and E7 responses // Clinical and Vaccine Immunology. 1999. Vol. 6, N 4. P. 494-498. DOI: 10.1128/CDLI.6.4.494-498
46. Welters M.J., Kenter G.G., Piersma S.J., et al. Induction of tumor-specific CD4+ and CD8+ T-cell immunity in cervical cancer patients by a human papillomavirus type 16 E6 and E7 long peptides vaccine // Clinical Cancer Research. 2008. Vol. 14, N 1. P. 178-187. DOI: 10.1158/1078-0432.CCR-07-1880
47. Maskey N., Thapa N., Maharjan M., et al. Infiltrating CD4 and CD8 lymphocytes in HPV infected uterine cervical milieu // Cancer Management and Research. 2019. Vol. 11. P. 7647-7655. DOI: 10.2147/ CMAR.S217264
48. Yaghoobi M., Le Gouvello S., Aloulou N., et al. FoxP3 overexpression and CD1a+ and CD3+ depletion in anal tissue as possible mechanisms for increased risk of human papillomavirus-related anal carcinoma in HIV infection // Colorectal Disease. 2011. Vol. 13, N 7. P. 768-773. DOI: 10.1111/j.1463-1318.2010.02283.x
49. Meier A., Bagchi A., Sidhu H.K., et al. Upregulation of PD-L1 on monocytes and dendritic cells by HIV-1 derived TLR ligands // AIDS. 2008. Vol. 22, N 5. P. 655-658. DOI: 10.1097/QAD.0b013e3282f4de23
50. Sobhani I., Walker F., Aparicio T., et al. Effect of anal epidermoid cancer-related viruses on the dendritic (Langerhans) cells of the human anal mucosa // Clinical Cancer Research. 2002. Vol. 8, N 9. P. 2862-2869. PMID: 12231528.
51. Allouch S., Malki A., Allouch A., et al. High-risk HPV oncoproteins and PD-1/PD-L1 interplay in human cervical cancer: recent evidence and future directions // Frontiers in Oncology. 2020. Vol. 10. P. 914. DOI: 10.3389/fonc.2020.00914
52. Keir M.E., Butte M.J., Freeman G.J., et al. PD-1 and its ligands in tolerance and immunity // Annual Review of Immunology. 2008. Vol 26. P. 677-704. DOI: 10.1146/ annurev.immunol.26.021607.090331
53. Matloubian M., Concepcion R.J., Ahmed R. CD4+ T cells are required to sustain CD8+ cytotoxic T-cell responses during chronic viral infection // Journal of Virology. 1994. Vol. 68, N 12. P. 8056-8063. DOI: 10.1128/JVI.68.12.8056-8063.1994
54. Deeks S.G., Tracy R., Douek D.C. Systemic effects of inflammation on health during chronic HIV infection // Immunity. 2013. Vol. 39, N 4. P. 633-645. DOI: 10.1016/ j.immuni.2013.10.001
55. Gulzar N., Copeland K.F. CD8+ T-cells: function and response to HIV infection // Current HIV Research. 2004. Vol. 2, N 1. P. 23-37. DOI: 10.2174/1570162043485077
56. Day C.L., Kaufmann D.E., Kiepiela P., et al. PD-1 expression on HIV-specific T cells is associated with T-cell exhaustion and disease progression // Nature. 2006. Vol. 443, N 7109. P. 350-354. DOI: 10.1038/ nature05115
57. Cockerham L.R., Jain V., Sinclair E., et al. Programmed death-1 expression on CD4+ and CD8+ T cells in treated and untreated HIV disease // AIDS. 2014. Vol. 28, N 12. P. 1749-1758. DOI: 10.1097/QAD.0000000000000314
58. Porichis F., Kaufmann D.E. Role of PD-1 in HIV pathogenesis and as target for therapy // Current HIV/AIDS Reports. 2012. Vol. 9, N 1. P. 81-90. DOI: 10.1007/s11904-011-0106-4
59. Grabmeier-Pfistershammer K., Steinberger P., Rieger A., et al. Identification of PD-1 as a unique marker for failing immune reconstitution in HIV-1-infected patients on treatment // Journal of Acquired Immune Deficiency Syndromes. 2011. Vol. 56, N 2. P. 118-124. DOI: 10.1097/QAI.0b013e3181fbab9f
60. Papasavvas E., Surrey L.F., Glencross D.K., et al. High-risk oncogenic HPV genotype infection associates with increased immune activation and T cell exhaustion in ART-suppressed HIV-1-infected women // Oncoimmunology. 2016. Vol. 5, N 5. P. е1128612. DOI: 10.1080/2162402X.2015.1128612
