Цель исследования. Комплексная оценка параметров спермограммы, уровня активных форм кислорода (АФК) и их взаимозависимости у субфертильных мужчин разного возраста. Материалы и методы. С июня по декабрь 2024 года в клинике репродукции был исследован эякулят 200 мужчин (медиана возраста 38 лет), которые имели жалобы на неудачные попытки зачатия, в том числе с помощью вспомогательных репродуктивных технологий (ВРТ). Каждому пациенту была исследована спермограмма с помощью инновационного набора «Спермограмма» (Россия) и проведена оценка уровня АФК с помощью набора («ОксиСпермNBT-Л&К», (Россия), т.н. Окси-Тест. Статистическая обработка результатов проведена с помощью встроенного пакета анализа табличного процессора Excel® 2016 MSO (© Microsoft, 2016), авторского (© В. С. Шелудько, 2001–2016) пакета прикладных электронных таблиц (ППЭТ) ‘Stat2015’; статистической программы MedCalc® 15.8 Portable (© MedCalc Software, 1993–2014). Результаты. Базовая оценка спермограммы инновационным методом позволила установить нормозооспермию у 19 % обследуемых и 81 % сценарий патоспермии (кроме криптозооспермии и азооспермии). Наблюдалась выраженная статистически достоверная (p < 0,0001) прямая зависимость (r = 0,429) между излишним уровнем АФК и возрастом мужчины, дискинезией (r = 0,478), некрозооспермией (r = 0,536); обратная зависимость между АФК и нормозооспермией (r = –0,364); умеренно выраженная статистически достоверная (p < 0,05) прямая зависимость с олигостенотератозооспермией (ОАТ), олигостенозооспермией (ОА), пиоспермией и гематоспермией. Общее число пациентов с наличием оксидативного стресса ОС (повышенный уровень АФК) составило 67 % (n = 134), из которых 19 % (n = 38) были с нормозооспермией. ОС эякулята чаще встречается у мужчин старше 35 лет. Максимальный разброс возрастных категорий (SD) отмечен в группе со средним уровнем АФК (±8,3 лет). В группе пациентов с высоким уровнем АФК возраст был на 12 лет старше, чем в группе пациентов с низким уровнем АФК. Выводы. Уровень АФК является интегральным показателем повреждения сперматозоидов, отражающим патологию эякулята и возрастные дегенеративные изменения сперматозоидов. Выявляемость ОС при патоспермии и достоверно значимые корреляционные связи уровня АФК с рядом параметров эякулята указывают на роль ОС в развитии патоспермии. Уровень АФК можно использовать в выявлении скрытой субфертильности, которая не выявляется при стандартном спермиологическом анализе.
1. Agarwal A., Durairajanayagam D., Tvrda E., Henkel R. Studies on sperm oxidative stress: a 2021 update // Reproductive Biology and Endocrinology. 2021. Vol. 19, Article 103. DOI: 10.1186/s12958-021-00799-9
2. Dias T.R., Agarwal A., Pushparaj P.N., Ahmad G. The role of ROS and antioxidants in male infertility: latest evidence and therapeutic advances // Biomedicines. 2023. Vol. 11, N3. P. 847. DOI: 10.3390/biomedicines11030847
3. Li Y., Liu H., Huang Z., Wang W. Lipid peroxidation and sperm quality: a systematic review and meta-analysis // Reproductive Toxicology. 2023. Vol. 117. P. 13 – 25. DOI: 10.1016/j.reprotox.2022.12.008
4. Fang P., Li Q., Lin X., Lin R. Impact of sperm DNA fragmentation on reproductive outcomes: an updated systematic review and meta-analysis // Andrology. 2023. Vol. 11, N2. P. 345 – 357. DOI: 10.1111/andr.13287
5. Alahmar A.T., Sengupta P., Dutta S., et al. Impact of sperm DNA fragmentation on assisted reproduction outcomes: a narrative review // International Journal of Reproductive BioMedicine. 2022. Vol. 20(2). P. 99 – 112. DOI: 10.18502/ijrm.v20i2.10542
6. Sharma R., Samanta L., Agarwal A. Oxidative stress and male infertility: pathophysiology, diagnostics, and therapeutic strategies // Free Radical Biology and Medicine. 2022. Vol. 180. P. 240 – 259. DOI: 10.1016/j.freeradbiomed.2022.05.010
7. Henkel R., Samanta L., Agarwal A. Oxidants, antioxidants and impact of oxidative status on male fertility // Current Opinion in Urology. 2022. Vol. 32(6). P. 584 – 590. DOI: 10.1097/MOU.0000000000001034
8. Li J., Tang X., Li Y. Mitochondrial dysfunction and oxidative stress in male infertility: from pathogenesis to therapeutic strategies // American Journal of Reproductive Immunology. 2024. Vol. 91(1). P. e13782. DOI: 10.1111/aji.13782
9. Wang Y., Fu X., Li H. Mechanisms of oxidative stress-induced sperm dysfunction // Frontiers in Endocrinology. 2025. Vol. 16. P. 1520835. DOI: 10.3389/fendo.2025.1520835
10. Christoforaki V., Venetis C., Goulis D. G., et al. The role of seminal oxidation reduction potential in male infertility: a systematic review and meta-analysis // Reproductive BioMedicine Online. 2025. DOI: 10.1016/j.rbmo.2025.104858
11. Calamai C., Chelli E., Ammar O., et al. Reliable detection of excessive sperm ROS production in subfertile patients: how many men with oxidative stress? // Antioxidants. 2024. Vol. 13, N9. P. 1123. DOI: 10.3390/antiox13091123
12. Pavuluri H., Bakhtiary Z., Panner Selvam M.K., Hellstrom W.J.G. Oxidative stress-associated male infertility: Current diagnostic and therapeutic approaches // Medicina. 2024. Vol. 60, N6. P. 1008. DOI: 10.3390/medicina60061008
13. Sengupta P., Pinggera G.-M., Calogero A.E., Agarwal A. Oxidative stress affects sperm health and fertility–time to apply facts learned at the bench to help the patient: lessons for busy clinicians // Reproductive Medicine and Biology. 2024. Vol. 23. P. e12598. DOI: 10.1002/rmb2.12598
14. Du C., Yu Y., Fan X. Analysis of research trends (2014 – 2023) on oxidative stress and male fertility based on bibliometrics and knowledge graphs // Frontiers in Endocrinology. 2024. Vol. 15. P. 1326402. DOI: 10.3389/fendo.2024.1326402
15. Nago M., Arichi A., Omura N., et al. Aging increases oxidative stress in semen // Investigative and Clinical Urology. 2021. Vol. 62(2). P. 233 – 238. DOI: 10.4111/icu.20200066
16. Nguyen-Powanda P., Robaire B. Oxidative stress and reproductive function in the aging male // Biology. 2020. Vol. 9, N9. P. 282. DOI: 10.3390/biology9090282
17. Moazamian A., Gharagozloo P., Aitken R.J., Drevet J.R. Oxidative stress and reproductive function: Sperm telomeres, oxidative stress, and infertility // Reproduction. 2022. Vol. 164(6). P. F125 – F133. DOI: 10.1530/REP-22-0189
18. Сапожкова Ж.Ю. Базовое исследование эякулята: на какие документы опираться специалистам КДЛ // Справочник заведующей КДЛ. 2025. №2. С. 48 – 60.
19. Патент РФ № 2 726 207. Способ комбинированного измерения концентрации пероксидазо-положительных клеток (нейтрофильных гранулоцитов) и сперматозоидов в эякуляте человека с использованием вариаций на основе цитохимического окрашивания / Сапожкова Ж.Ю., Еремин К.И. Заявл. 2019136865, 18.11.2019. Опубл. 09.07.2020. Бюл. №19.
20. Сапожкова Ж.Ю., Еремин К.И. Модификация протокола аналитического этапа спермограммы // Клиническая лабораторная диагностика. 2020. Т. 65, №2. С. 106 – 110.
21. Сапожкова Ж.Ю., Еремин К.И., Долгов В.В. Унификация процедур цитохимического окрашивания эякулята для определения фертильности мужчины // Лабораторная диагностика. Восточная Европа. 2020. Т. 9, №1 – 2. С. 41 – 49. DOI: 10.34883/PI.2020.9.1.026
22. Сапожкова Ж.Ю., Еремин К.И. Модификация процедур цитохимического окрашивания эякулята для определения статуса фертильности мужчины // Справочник заведующей КДЛ. 2020. №5. С. 36 – 43.
23. Сапожкова Ж.Ю., Репникова А.Р. Процедура выполнения рутинной спермограммы. Что учесть в рабочей инструкции // Справочник заведующей КДЛ. 2020. №6. С. 66 – 79.
24. Сапожкова Ж.Ю. Показатели базового и расширенного анализа эякулята у пациентов с бесплодием: цитология осадка эякулята, фрагментация ДНК сперматозоидов и активные формы кислорода при нормозооспермии и вискозипатии. Клинические наблюдения // Лабораторная и клиническая медицина. Фармация. 2024. Т. 4, №3. С. 24 – 30. DOI: 10.14489/lcmp.2024.03.pp.024-030
25. Патент РФ № 2 831 319. Способ оценки активных форм кислорода при диагностике мужского бесплодия / Давидова Ж.Ю. Заявл. 2023133052, 13.12.2023. Опубл. 04.12.2024. Бюл. №34.
26. Давидова Ж.Ю. Технологическое решение для оценки активных форм кислорода и дисперсии хроматина сперматозоидов: адаптация рекомендаций лабораторного руководства ВОЗ (2021) к практике медицинских лабораторий России // Лабораторная и клиническая медицина. Фармация. 2023. Т. 3, №3. С. 47 – 66. DOI: 10.14489/lcmp.2023.03.pp.047-066
27. Шелудько В.С., Девяткова Г.И. Теоретические основы медицинской статистики (статистические методы обработки и анализа материалов научно-исследовательских работ): учеб.-метод. пособие. 3-е изд., испр. и доп. Пермь: ПГМУ; Саратов: Амирит; 2019. 96 с. ISBN 978-5-00140-429-3.
28. Афифи Ф., Эйзен С. Статистический анализ: подход с использованием ЭВМ: пер. с англ. М.: Мир, 1982. 488 с.
29. Lin C.C., Wu J.Y., Lin Y.H., et al. Aging and oxidative stress in male infertility: an overview of molecular mechanisms and clinical implications // Oxidative Medicine and Cellular Longevity. 2022. Vol. 2022. Article ID 4878645. DOI: 10.1155/2022/4878645
30. Ko E.Y., Siddiqi K.M., Sabanegh E.S.Jr. Age and oxidative stress in male infertility: current evidence and future directions // Urology. 2021. Vol. 149. P. 106 – 112. DOI: 10.1016/j.urology.2020.12.034
31. Kamkar M., Sabbaghian M., Totonchi M., et al. Sperm DNA fragmentation and oxidative stress: correlation with sperm morphology and motility // Basic and Clinical Andrology. 2022. Vol. 32, Article 3. DOI: 10.1186/s12610-021-00138-4
32. Hosen M.B., Islam M.R., Begum F., Kabir Y. Reactive oxygen species and male infertility: latest insights into pathophysiology and interventions // Andrology. 2023. Vol. 11(3). P. 505 – 518. DOI: 10.1111/andr.13344
33. Nguyen N.D., Le M.T., Dang H.N.T., et al. Impact of semen oxidative stress on sperm quality: initial results from Vietnam // Journal of International Medical Research. 2023. Vol. 51(8). DOI: 10.1177/03000605231188655
